En el transcurso de los años y como fruto de los trabajos
de investigación se han desarrollado nuevos gases anestésicos
halogenados menos inflamables y menos tóxicos. En la década
de los 80 se introdujeron el fluoroxeno, halotano, metoxiflurano,
enflurano e isoflurano y en la de los 90 el desflurano. Ya a finales
del siglo XX se empezó a utilizar el sevoflurano que es considerado
el anestésico inhalatorio ideal a principios del siglo XXI.
Todos estos gases anestésicos, a excepción del protóxido
de nitrógeno, que es un gas, son líquidos que se aplican
por vaporización. Las cantidades y mezclas aplicadas a cada
paciente, dependen de la patología y naturaleza de cada uno
de ellos, del tipo de anestesia que se quiera obtener y de los hábitos
de cada anestesista. El hecho de que se usen cada vez con mayor
frecuencia los agentes intravenosos (anestesia farmacológica)
permite que las concentraciones utilizadas de anestésicos
inhalatorios sean progresivamente más bajas. En la tabla
1 se revisan los anestésicos inhalatorios disponibles actualmente.
TABLA 1
Características fisicoquímicas de los anestésicos
| - |
Desflurano (Desflurane, Suprane) |
Enflurano (Enflurane. Éthrane) |
Halotano (Halothane, Fluothane) |
Isoflurano (Isoflurance,
Forane) |
Metoxiflurano (Methoxyflurane Penthrane) |
Sevoflurano (Sevorane,
Sevofrane) |
Óxido de dinitrógreno (Nitrous
oxide) |
| Fórmula química |
C3F4OCIH3 |
C3F4OCI2H2 |
C2F4CIH |
C3F5OCIH2 |
C3F2OCI2H4 |
C4F6OH3 |
N2O |
| Peso molecular |
168.0 |
184.5 |
1974 |
184.0 |
165.0 |
200.1 |
44.0 |
| Punto de ebullición |
22.8 |
56.5 |
50.2 |
48.5 |
104.7 |
58.6 |
- |
| Densidad |
1.47 |
1.52 |
1.86 |
1.5 |
1.41 |
1.52 |
- |
| Presión de vapor a 20°C |
667 |
175.0 |
243.0 |
250.0 |
25.0 |
157 |
- |
| Olor |
Inodoro |
Agradable, a éter |
Agradable, dulce |
Agradable, picante |
Agradable, afrutado |
Agradable, a éter |
Agradable, dulce |
| Coeficientes de partición Sangre/gas |
0.42 |
1.9 |
2.3 |
1.40 |
13.0 |
0.63 |
0.47 |
| Cerebro/gas |
- |
2.6 |
4.1 |
3.65 |
22.1 |
|
0.50 |
| Grasa/gas |
- |
105.0 |
185.0 |
94.50 |
890.0 |
|
1.22 |
| Hígado/gas |
- |
3.8 |
7.2 |
3.50 |
24.8 |
|
0.38 |
| Músculo/gas |
- |
3.0 |
6.0 |
5.60 |
20.0 |
|
0.54 |
| Aceite/gas |
18.7 |
98.5 |
224.0 |
97.8 |
930.0 |
50 |
1.4 |
| Agua/gas |
0.23 |
0.8 |
0.7 |
0.61 |
4.5 |
0.36 |
0.47 |
| Goma/gas |
- |
74.0 |
120.0 |
0.62 |
630.0 |
14 |
1.2 |
| Metabolización (%) |
0.02 |
2.4 |
15-20 |
0.20 |
50.0 |
3 |
- |
La toxicidad aguda de los gases halogenados como el cloroformo, halotano
y enflurano está bien documentada. Exposiciones a altas concentraciones
de estos gases, tales como las requeridas para la inducción
de la anestesia causan lesiones en el hígado y daños
en el sistema renal. Los estudios con animales refuerzan la evidencia
de los efectos adversos sobre el hígado y el riñón
como consecuencia de la exposición a estos gases.
Los nuevos gases anestésicos introducidos después
de 1977 son considerados menos tóxicos que los primeros (más
"seguros"), aunque se han descrito en la bibliografía
leves y pasajeras lesiones asociadas con exposiciones agudas a isoflurano,
sevoflurano y desflurano a unos niveles de concentración
requeridos para la anestesia (de 1000 a 10000 ppm, dependiendo del
gas). Raras veces se dan lesiones o necrosis hepáticas. En
las tablas 2 y 3 se resumen los datos toxicológicos disponibles.
TABLA 2
Efectos en exposiciones agudas
| Vías de entrada |
N2O |
Anestésicos halogenados |
| Inhalación |
Excitación
Vértigo
Somnolencia
Descoordinación
A concentración > 50% produce anestesia clínica
A altas concentraciones pueden causar asfixia y muerte por falta
de oxigeno |
Confusión
Vértigo
Nauseas
Somnolencia |
| Contacto con la piel, mucosas y ojos |
Líquido puede causar congelación grave |
Sequedad
Enrojecimiento |
TABLA 3
Efectos en exposiciones subagudas o crónicas
|
Efectos demostrados en humanos
por exposición a bajas concentraciones (trazas) de gases anestésicos
|
| Generales |
Trastornos de percepción, cognoscitivos y de
habilidad motora |
| Sobre el hígado |
Cambios funcionales |
| Sobre el riñón |
En general no son nefrotóxicos |
| Toxicidad para la reproducción |
No está suficientemente demostrada |
| Carcinogenicidad |
No está demostrada |
Valores límite ambientales
Los Limites de Exposición Profesional para Agentes Químicos
adoptados por el INSHT para el período 2001/2002 asignan los
valores límite ambientales para exposición diaria (VLAD-ED)
que se indican en la tabla 4. Sin embargo, debe tenerse en cuenta
que los valores para el halotano y enflurano están probablemente
tomados de los TLV de la American Conference of Governmental Industrial
Hygienists (ACGIH, USA) y en la documentación de los mismos
se indica que el del halotano está fijado por comparación
con la toxicidad y los valores asignados al tricloroetileno (clasificado
como cancerígeno de categoría 2 en la UE) y cloroformo.
El TLV para el enflurano se ha fijado asumiendo que es un anestésico
más seguro que el halotano y que no se conocen efectos adversos
a concentraciones subanestésicas.
TABLA 4
Valores límite ambientales para gases anestésicos
| VLA-ED |
ppm |
mg/m3 |
| N2O |
50 |
92 |
| Enflurano |
75 |
575 |
| Halotano |
50 |
410 |
| Isoflurano |
50 |
383 |
En 1977 el National Institute for Occupational Safety and Health (NIOSH),
estableció para los agentes anestésicos como cloroformo,
tricloroetileno, halotano, metoxiflurano, fluoroxeno y enflurano un
valor límite recomendado (REL) de 2 ppm como valor techo durante
60 min. El isoflurano, desflurano y sevoflurano, fueron incluidos
posteriormente, en esta recomendación. Estos valores REL propuestos
por NIOSH estaban basados en la más baja concentración
capaz de ser detectada utilizando los procedimientos descritos para
la toma de muestra y análisis, y son aplicables a cualquier
agente anestésico halogenado cuando se utiliza solo. Esta estrategia
derivada de los valores REL para los gases anestésicos es debido
a que NIOSH reconoce que pueden ocurrir efectos adversos en trabajadores
expuestos, pero, que los datos que se tienen sobre exposición
a estos gases en humanos y animales son insuficientes para establecer
un valor límite seguro.
Los gases anestésicos halogenados no suelen aplicarse solos,
sino que muchas veces se suministran con el óxido de dinitrógeno.
Estudios de control ambiental llevados a cabo en quirófanos
por el NIOSH y por el INSHT, han demostrado que cuando los gases
halogenados son suministrados junto con el óxido de dinitrógeno
en las proporciones habituales en anestesia, a concentraciones ambientales
del óxido de nitrógeno por debajo de las 25 ppm, las
concentraciones de los gases halogenados que le acompañan
se mantienen siempre por debajo de las 0,5 ppm.
No están establecidos hasta el momento valores REL (NIOSH)
para el sevoflurano, desflurano e isoflurano y ni la Occupational
Safety and Health Administration (OSHA) ni la ACGIH tienen valores
límite para estos compuestos (PEL y TLV, respectivamente)
hasta el momento.
En el ámbito hospitalario se usan de manera extensiva los
criterios establecidos por su momento por el NIOSH.
Propuestas de valores límite biológicos
Los indicadores biológicos de la exposición a
agentes anestésicos estudiados hasta el momento no presentan
una especificidad y sensibilidad suficientes para que sean operativos.
El INSHT y la ACGIH no tienen asignados VLB ni BEI para ningún
agente anestésico. Sin embargo, existen estudios para poder
llegar a establecer VLB relacionados con los VLA. En la tabla 5
se indican los procesos de metabolización y eliminación
de estos gases y en las tablas 6 y 7 un resumen de los diferentes
valores propuestos existentes.
TABLA 5
Eliminación y metabolización de los agentes anestésicos
| Agente anestésico |
Eliminación aire espirado |
Metabolización |
Metabolitos en orina |
| Óxido de dinitrógeno |
< 90 % |
- |
- |
| Halotano |
60-80% |
5% en Hígado |
Ácido trifluoroacético |
| Enflurano |
80% |
2,5 % en Hígado |
Difluorometoxidifluoroacéticolón fluor |
| Isoflurano |
> 70 % |
0,2% |
Ácido trifluoroacéticolón fluor |
| Desflurano |
|
0,02% |
Ácido trifluoroacético |
| Sevoflurano |
|
3 % |
Hexafluoroisopropano |
TABLA 6
Concentración (µg/I) en orina de óxido de dinitrógeno
a distintas concentraciones ambientales según diversos autores
(8)
| AUTORES |
Concentración de N2O
en aire, ppm |
| 25 |
50 |
70 |
100 |
200 |
| Nun et al. (1981) |
|
|
|
|
191 |
| Sonander et al. (1983) |
|
|
66 |
|
|
| Imbriani et al. (1988) |
13 |
27 |
|
55 |
|
| Trevisan et al. (1990) |
|
21 |
|
|
192 |
| Franco et al. (1992) |
|
|
|
46 |
|
| Buratti et al. (1993) |
|
27 |
|
55 |
|
| INSHT (1993) |
19 |
39 |
55 |
79 |
159 |
TABLA 7
Anestésicos halogenados
| Anestésico |
Indicador biológico |
Valor propuesto |
Momento del muestreo |
Exposición ambiental de referencia |
| Halotano |
Aire exhalado |
0,05 ppm |
Durante la exposición |
5 ppm |
| Orina |
0,25 mg/g creatinina |
Final de la jornada laboral |
--- |
| Ácido trifluoroacético en sangre |
2,5 mg/l |
Final de la semana laboral |
--- |
| Isoflurano |
Orina |
3,3 μg/I |
Después de 4 h |
2 ppm |
Lectura directa
Halotano, isoflurano, sevoflurano, desflurano y N2O pueden determinarse
mediante monitores de lectura directa. Un ejemplo es el analizador
de aire portátil MIRAN® que determina estos gases anestésicos
dentro de unos márgenes de trabajo que van de 0 a 100 ppm
y con un límite de detección (LOD) entre 0,3 y 0,7
ppm. La OSHA (USA) también recomienda la utilización
de este sistema de medida.
Captación activa
El método OSHA 103, ver la tabla 8 está validado
para la determinación en aire de Isoflurano, enflurano y
halotano y el OSHA 106, ver la tabla 9, para el desflurano. El sevoflurano
no tiene método validado pero los datos sobre la información
de toma de muestra de productos químicos editada por OSHA
toma la muestra y sigue las pautas de análisis del método
106.
TABLA 8
Determinación de gases anestésicos halogenados en
aire. Método de captación activa
| Isoflurano, Enflurano y Halotano |
| Método |
Validado OSHA 103 |
| Captación |
Tubos adsorbentes Anasorb 747 (140/70
mg por sección)
Tubos adsorbentes Anasorb CSM (150/75 mg por sección) |
| Volumen máx. 12 l |
Caudal máx. 0,05 I/min |
| Desorción |
Ambos tubos con SZC |
| Análisis por |
Cromatografia de gases CG/ FID |
| Condiciones de análisis |
Columna Capilar Stabilwax DB de 60 m,
0,32 mm DI, 1,0 μm espesor |
| Gas portador |
H2: 1,2 ml/min |
| Detector FID |
H2: 30 ml/min; Aire: 350 ml/min |
| Temperaturas |
Columna: 60 °C
Inyector y detector: 250 y 300 °C |
| Límite de detección |
377 ppb |
| Margen de trabajo |
de 0,3 ppm a 150 ppm |
TABLA 9
Determinación de gases anestésicos halogenados en
aire. Adaptación del método OSHA 106
|
Desflurano / Sevoflurano
(*)
|
| Método |
Validado OSHA 106 |
| Captación |
Tubos adsorbentes Anasorb 747 (140/70 mg por sección) |
| Volumen máx. 31 |
Caudal máx. 0,05 I/min |
| Desorción |
Tolueno / S2C (**) |
| Análisis por |
Cromatografia de gases CG/ FID |
| Condiciones de análisis |
Columna Capilar sílice fundida SPB-1 de 60 m, 0,32
mm DI, 4 mm de espesor |
| Gas portador |
He: 2,7 ml/min |
| Detector FID |
h1:30 ml/min; Aire: 350 ml/min |
| Temperaturas |
Columna: 60 °C
Inyector y detector: 250 y 300°°-C |
| Límite de detección |
33 ppb |
| Margen de trabajo |
de 0,03 ppm a 150 ppm |
|
(*) Sin información
sobre su validación
(**) Se trata
de una modificación comprobada del método validado; implica
la utilización de una columna DB-Wax de 60 m, 0,53 mm Di y
1 mm de espesor de capa.
|
Captación pasiva (por difusión)
Una determinación de isoflurano está descrita en
el método aceptado por el INSHT MTA/MA-027/A95. "Determinación
de isoflurano en aire - método de captación con muestreadores
pasivos por difusión - desorción térmica/ cromatografía
de gases". Ver la tabla 10
La captación pasiva y posterior análisis de las muestras
siguiendo los procedimientos descritos en los métodos OSHA
103 y 106 se puede llevar a cabo con los monitores pasivos SKC-575-002.
Ver la tabla 11.
TABLA 10
Determinación de isoflurano en aire. Captación por
difusión/desorción térmicalcromatografia de
gases
| Isoflurano |
| Método |
Aceptado MTA7MA-027/A95 |
| Captación |
Tubos de acero inoxidable de 89 mm de longitud y
6,4 mm de diámetro, rellenos con 150 mg de Chromosorb 106 |
| Velocidad de muestreo (SR): 3,42 ng/ppm.min |
| Desorción |
Térmica |
| Análisis por |
Cromatografia de gases CG/ FID |
| Condiciones de análisis |
Columna Capilar FFAP de 25 m, 0,2 mm DI |
| Gas portador |
N2: 68,9 kPa (10 psi) |
| Detector FID |
H2: 30 ml/min; Aire: 350 ml/min |
| Temperaturas |
Columna: 90º C
Detector: 200º C |
| Límite de detección |
2 ng |
| Margen de trabajo |
de 1,3 ppm a 26,5 ppm |
TABLA 11
Determinación de gases anestésicos halogenados mediante
captación pasiva
| Isoflurano / Desflurano / Sevoflurano |
| Captación |
Monitores SKC 575-002 Anasorb747 |
| Velocidad de captación SR (ml/min) |
13,7 Isoflurano
14,8 Desflurano
13,1 Sevoflurano |
| Tiempo de muestreo |
mínimo 15 min / máximo 8 horas |
| Desorción |
con S2C 6 tolueno |
| Análisis por |
Cromatografia de gases CG/ FID |
Como ya se ha comentado en el apartado 3, en el momento de redacción
de esta NTP, no se hay establecidos valores VLB ni BEI para los
compuestos objeto del presente estudio. Sin embargo, se resumen
los métodos propuestos.
Determinación de isoflurano en aire exhalado
La captación de vapores de isoflurano en el aire exhalado
se realiza mediante un sistema de muestreo que permite la selección
de la fracción final del aire exhalado reteniéndose
los vapores presentes en un tubo adsorbente relleno de Chromosorb
106 para su posterior análisis mediante desorción
térmica y cromatografia de gases. Este procedimiento de análisis
está descrito por el método aceptado por el INSHT
MTA/MB-021/A92. (Tabla 12)
TABLA 12
Isoflurano. Control biológico de la exposición (VLB)
| Isoflurano en aire exhalado |
| Método |
Aceptado MTA/MB-021/A92. |
| Captación |
Instrumento de recogida del aire exhalado descrito
en el método/
Tubos de Chromosorb 106 (150 mg de 20/40 mallas). |
| Desorción |
Térmica |
| Análisis por |
Cromatografia de gases CG/ FID |
| Condiciones de análisis |
Columna Capilar FFAP de 25 m, 0,2 mm DI |
| Gas portador |
N2: 68,9 kPa (10 psi) |
| Detector FID |
H2 :30 ml/min; Aire: 350 ml/min |
| Temperaturas |
Columna: 70 °C
Detector: 200 °C |
| de 0.6 ppm a 3.28 ppm |
| Margen de trabajo |
Determinación de óxido de dinitrógeno en orina
Se toman las muestras antes y después de la exposición
y se analizan por cromatografía de gases mediante la técnica
del espacio de cabeza. Este procedimiento de análisis está
descrito en el método propuesto por el INSHT MTA/118(1)/P00.
(Tabla 13)
TABLA 13
N2O. Control biológico de la exposición
| N2O en orina |
| Método |
Propuesto MTA/118(1)/P00. |
| Toma de muestra |
Antes y después de la jornada laboral |
| Tratamiento de la muestra |
10 ml de orina se calientan a 37 °C
(2h) / Se analiza el espacio de cabeza |
| Análisis por |
Cromatografía de gases CG/ FI D |
| Condiciones de análisis |
Columna Capilar PoraPLOT Q de 27,5 m,
0,32 mm DI, 10 μm a 60 °C |
| Gas portador |
He: 7,5 psi
Auxiliar: N2 55 ml/min |
| Detector: ECD a 250 °C |
| Margen de trabajo |
De 0.4 μg/I
a 500 μg/I |
Las recomendaciones contenidas en la tabla 9 de la NTP 141 siguen
siendo totalmente válidas y aplicables hoy en día,
aunque debe tenerse en cuenta la evolución que ha tenido
lugar, tanto en los anestésicos utilizados, como en las prácticas
de anestesia. A lo expuesto allí, habría que añadir
las siguientes recomendaciones y comentarios.
Utilización de sistemas anticontaminación. La utilización
de sistemas de eliminación de gases residuales es la medida
preventiva más eficaz, ya que elimina el contaminante de
manera localizada en el momento de su generación.
Sistemas alternativos de aspiración. En aquellos casos en
los que no es posible conectar el sistema de eliminación
de gases anestésicos que lleva la máquina de anestesia,
como por ejemplo los quirófanos de pediatría y ORL,
existen mascarillas de doble capa y otros sistemas alternativos
de extracción localizada. (Ver figuras 1 y 2).
Garantizar una ventilación general suficiente. La ventilación
general del quirófano debe estar perfectamente dimensionada
para asegurar la eliminación de la contaminación residual,
mantener unas condiciones termohigrométricas determinadas
(regulables a voluntad de los ocupantes) y garantizar su permanente
sobrepresión.
Establecer un plan de mantenimiento preventivo. Es importante incluir
el control periódico de las instalaciones en el plan de mantenimiento
preventivo del hospital.
No descuidar la formación e información del personal.
Especialmente en lo que se refiere a prácticas de trabajo
seguro, revisión de medidas de seguridad y reducción
al máximo de la generación de concentraciones de gases
anestésicos residuales.
FIGURA 1
Sistema de doble máscara
FIGURA 2
Máscara ajustable
Bibliografía
ACGIH
Threshold Limit Values and Biological Exposure Indices for 2002
ACGIH, Cincinnati, Oh, USA, 2002.
CCE.
Anestésicos por vía inhalatoria. En Biological indicators
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12174 EN.
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Generalitat Valenciana. Conselleria de Sanitat. Direcció
General de Salut Pública. Valencia 1997.
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En Occupational Health for Health Care Workers, Hagberg, Hofmann,
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en España 2001-2002.
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INSHT
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NIOSH NIOSH
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En Occupational Health for Health Care Workers, Hagberg, Hofmann,
Westlander, Editores, ICOH, ECOMED, Landsberg, RFA, 1993, update
1995. Pag. 221
Redactores:
Xavier Guardino Solá
Doctor en Ciencias Químicas
Mª Gracia Rosell Farrás
Ingeniero Técnico Químico
CENTRO NACIONAL DE CONDICIONES
DE TRABAJO